Diversidade genética e fenotípica de uma população de plântulas de moringa a partir de descritores morfológicos

Autores

DOI:

https://doi.org/10.46420/TAES.e230004

Palavras-chave:

Moringa oleifera Lam, variabilidade, correlações, potencial alimento

Resumo

A moringa (Moringa oleifera Lam. - Moringaceae) é uma planta originária da Índia, que vem sendo amplamente cultivada em diversas regiões do mundo, especialmente devido às propriedades nutricionais de suas folhas que possuem elevado interesse econômico, medicinal e industrial. No entanto, não há relatos sobre a diversidade genotípica e fenotípica das plântulas de moringa cultivadas na região Centro-Oeste do Brasil. Este estudo teve como objetivo caracterizar uma população de plântulas de moringa por meio de diferentes descritores morfológicos qualitativos. Uma população constituída por 1.263 plantas de moringa com 28 dias foi inicialmente classificada e separada em quatro grupos fenotípicos distintos com base na coloração do hipocótilo [plântulas com hipocótilo de cor verde (100% verde), ¾ verde (75% verde e 25% roxo), ¾ roxo (25% verde e 75% roxo), e hipocótilo roxo (100% roxo)]. Inicialmente, foram avaliadas a taxa de emergência das plântulas e a frequência de ocorrência das distintas classes de cor do hipocótilo na população total. Posteriormente, foram avaliados 10 descritores morfológicos em cada grupo de plantas com coloração distinta do hipocótilo. A taxa de emergência das plantas foi de 74%, indicando a adequada qualidade fisiológica das sementes. A separação da população em quatro grupos fenotípicos com base na cor do hipocótilo permitiu separar 432 plantas (34,2%) com hipocótilo de cor verde, 480 plantas (38,0%) de cor ¾ verde, 336 plantas (26,6%) de cor ¾ roxo e 15 plantas (1,2%) com hipocótilo de cor roxo. Os resultados reportaram que dos dez descritores morfológicos avaliados, apenas o tipo de inserção do primeiro par de folha (TI_1F) e a altura de inserção da primeira folha (AI_1F) possuem diferenças significativas (P < 0.05) entre os distintos grupos fenotípicos de plântulas de moringa. Plântulas do grupo fenotípico com hipocótilo de cor roxo ou ¾ roxo possuem em sua totalidade a inserção do primeiro par de filha do tipo oposto, ao passo que as plântulas com hipocótilo de cor verde e ¾ verde possuem, respectivamente, 25% e 42% das plantas com a inserção do primeiro par de folhas do tipo alternado. Plântulas com hipocótilo de cor roxo possuem maior altura de inserção da primeira folha (AI_1F) quando comparadas as plântulas de cor verde e ¾ verde. Correlações altamente significativas e negativas foram obtidas entre TI_1F e DC (–0,99, P < 0,05) e VR (–0,96; P < 0,05). Correlações altamente significativas e positivas foram obtidas entre AI_1F e DC (0,96; P < 0,05). Pode-se afirmar que existe variabilidade genética e fenotípica dentro de uma população de plântulas de moringa, e os distintos grupos fenotípicos separados com base na coloração do hipocótilo possuem algumas características ou descritores morfológicos típicos do seu grupo

Referências

Aguilera, J. G.; Marim, B. G.; Setotaw, T. A.; Zuffo, A. M.; Nick, C.; & Silva, D. J. H. (2019). The combination of data as a strategy to determine the diversity of tomato subsamples. Amazonian Journal of Plant Research, 3, 276-289. DOI: 10.26545/ajpr.2019.b00035x

Aguilera, J. G.; Pessoni, L. A.; Rodrigues, G. B.; Elsayed, A. Y.; Silva, D. J. H.; & Barros, E. G. (2011). Genetic variability in tomato (Solanum lycopersicon Mill.) by ISSR markers. Revista Brasileira de Ciências Agrárias, 6(2), 243-252. DOI: 10.5039/agraria.v6i2a998

Aguilera, J. G.; Ribeiro, E. B.; Nascimento, A. C.; Silva, M. V.; Carvalho, R. d.; Cocco, A. S.; Barreto, A. F.; Martins, G. S.; Barcelos, R. P.; Rodrigues, J. A.; Steiner, F; & Bardiviesso, D. M. (2023). Qualitative and quantitative descriptors for quantifying the genetic diversity of bean seeds. Trends in Agricultural and Environmental Sciences, (e230001), DOI: 10.46420/TAES.e230001

Aristil., J.; Pierre, J. S., & Dominique, L. (2020). Phenotypic diversity of Haitian Benzolive (Moringa oleifera Lam.). Plantae Scientia, 3(1), 01-06. DOI: 10.32439/ps.v3i1.1-6

Bhering, L. L. (2017). Rbio: A Tool For Biometric And Statistical Analysis Using The R Platform. Crop Breeding and Applied Biotechnology, 17, 187-190. DOI: 10.1590/1984-70332017v17n2s29

Elsayed, A. Y.; Hassan, B. A. A.; Hassanin, A. A.; Zyada, H. G.; Ismail, H. E. M.; & Aguilera, J. G. (2023). Selection differential, genetic gain and heritability for yield and quality in tomatillo (Physalis ixocarpa Brot.). Ciência e Agrotecnologia, 47, e013722. DOI: 10.1590/1413-7054202347013722

Gopalakrishnan, L.; Doriya, K.; & Kumar, D. S. (2016). Moringa oleifera: A review on nutritive importance and its medicinal application. Food Science and Human Wellness, 5(2): 49-56.

Gomes, F. P. (2000). Curso de estatística experimental. Piracicaba: Degaspari.

Ibrahim, I. R.; & Ameen, S. K. M. (2017). In vitro propagation of Moringa oleifera. The Iraqi Journal of Agricultural Science, 48(4), 1089-1098.

Jesus, A. R.; Marques, N. S.; Ribeiro, E. J. N.; Tuyuty, P. L. M.; & Pereira, S. A. (2013). Dossiê técnico cultivo da Moringa oleifera - Serviço Brasileiro de Respostas Técnicas. Disponível em: http://www.respostatecnica.org.br/dossie-tecnico/downloadsDT/Mjc2ODU=. Acesso em: 09 out. 2023

Leone, A.; Spada, A.; Battezzati, A.; Schiraldi, A.; Aristil, J., & Bertoli, S. (2015). Cultivation, genetic, ethnopharmacology, phytochemistry and pharmacology of Moringa oleifera leaves: an overview. Int J Mol Sci., 16(6), 12791-12835. DOI: 10.3390/ijms17122141

Leone, A.; Spada, A.; Battezzati, A.; Schiraldi, A.; Aristil, J.; & Bertoli, S. (2016). Moringa oleifera seeds and oil: Characteristics and uses for human health. International journal of molecular sciences, 17(12), 2141. DOI: 10.3390/ijms17122141

Morales-Aranibar, L.; Yucra, F. E. Y.; Aranibar, C. G. M.; Saenz, M. C.; Gonzales, H. H. S.; Aguilera, J. G.; Alvarez, J. L. L.; Zuffo, A. M.; Steiner, F.; Ratke, R. F.; & Teodoro, P. E. (2023). First report on the genetic diversity of populations of Gossypium barbadense L. and Gossypium hirsutun L. in the Amazonian native communities, Cusco Peru. Plants, 12, 865. DOI: 10.3390/plants12040865

Noronha, B. G.; Medeiros, A. D.; & Pereira, M. D. (2018). Avaliação da qualidade fisiológica de sementes de Moringa oleifera Lam. Ciência Florestal, 28(1), 393-402. DOI: 10.5902/1980509831615

Nouman, W.; Siddiqui, M. T.; Basra, S.; Ahmed, M.; Afzal, I.; & Rehman, H. U. (2012). Enhancement of emergence potential and stand establishment of Moringa oleifera Lam. by seed priming. Turkish Journal of Agriculture and Forestry, 36(2), 227-235. DOI: 10.3906/tar-1103-39

Queiroga, V. P.; Figueiredo-Neto, A.; & Albuquerque, E. M. B. (2022). Moringa (Moringa oleífera LAM): Sistema de produção e utilização. Campina Grande: AREPB, 178p.

Rosa, T. L. M.; Jordaim, R. B.; Alexandre, R. S.; de Araujo, C. P.; Gonçalves, F. G.; & Lopes, J. C. (2018). Controlled release fertilizer in the growth of Moringa oleifera LAM. seedlings. Floresta, 48(3), 303-310. DOI: 10.5380/rf.v.48 i3.50063

Sampaio, A. P. L.; Aguilera, J. G.; Mendes, A. M. S.; Argentel-Martinez, L.; Zuffo, A. M.; & Teodoro, P. E. (2023). The role of the genetic diversity of Capsicum spp. in the conservation of the species: qualitative and quantitative characterization. Ciência e Agrotecnologia, 47, e009122. DOI: 10.1590/1413-7054202347009122

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Publicado

2023-10-21

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Seção Artigos